HJ 347.2-2018 水质 粪大肠菌群的测定 多管发酵法

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中华人民共和国国家环境保护标准
HJ 347.2-2018
部分代替 HJ/T 347-2007
水质 粪大肠菌群的测定 多管发酵法
Water quality—Determination of fecal coliform—Manifold zymotechnics
（ 发布稿）
本电子版为发布稿。 请以中国环境出版集团出版的正式标准文本为准。
2018-12-26 发布 2019-06-01 实施

生 态 环 境 部 发 布

目 次
前 言.................................................................................................................................................ii
1 适用范围.......................................................................................................................................1
2 规范性引用文件...........................................................................................................................1
3 术语和定义...................................................................................................................................1
4 方法原理.......................................................................................................................................1
5 干扰和消除...................................................................................................................................2
6 试剂和材料...................................................................................................................................2
7 仪器和设备...................................................................................................................................3
8 样品...............................................................................................................................................3
9 分析步骤.......................................................................................................................................4
10 结果计算与表示.........................................................................................................................5
11 精密度和准确度.........................................................................................................................6
12 质量保证和质量控制.................................................................................................................6
13 废物处理.....................................................................................................................................7
附录 A（ 资料性附录） 最大可能数（ MPN） 表............................................................................8
附录 B（ 资料性附录） 粪大肠菌群检验记录及报告推荐格式.................................................. 12
前 言
为贯彻《 中华人民共和国环境保护法》 和《 中华人民共和国水污染防治法》 ， 保护生态
环境， 保障人体健康， 规范水中粪大肠菌群的测定方法， 制定本标准。
本标准规定了测定地表水、 地下水、 生活污水和工业废水中粪大肠菌群的多管发酵法。
本标准是对《 水质 粪大肠菌群的测定 多管发酵法和滤膜法（ 试行）》 （ HJ/T 347-2007）
多管发酵法部分的修订。
本标准首次发布于 2007 年， 原起草单位为中国环境监测总站。 本次为第一次修订。
本次修订的主要内容如下：
——完善了方法原理的表述；
——增加了 12 管法和 15 管法的检出限；
——分析步骤中增加了 12 管法， 完善了样品稀释方法；
——增加了规范性引用文件、 术语和定义、 干扰和消除、 仪器和设备、 样品采集、 样品
保存、 精密度和准确度、 质量保证和质量控制、 废物处理等章节；
——将 MPN 表移至附录中。
自本标准实施之日起， 《 水质 粪大肠菌群的测定 多管发酵法和滤膜法（ 试行）》
（ HJ/T 347-2007） 废止。
本标准的附录A和附录B为资料性附录。
本标准由生态环境部生态环境监测司、 法规与标准司组织制订。
本标准起草单位： 辽宁省环境监测实验中心。
本标准验证单位： 大连市环境监测中心、 丹东市环境监测中心站、 锦州市环境监测中心
站、 辽阳市环境监测站、 沈阳市疾病预防控制中心和辽宁北方环境检测技术有限公司。
本标准生态环境部2018年12月26日批准。
本标准自2019年6月1日起实施。
本标准由生态环境部解释。
1
水质 粪大肠菌群的测定 多管发酵法
1 适用范围
本标准规定了测定水中粪大肠菌群的多管发酵法。
本标准适用于地表水、 地下水、 生活污水和工业废水中粪大肠菌群的测定。
本方法的检出限： 12 管法为 3 MPN/L； 15 管法为 20 MPN/L。
2 规范性引用文件
本标准引用了下列文件或其中的条款。 凡是不注日期的引用文件， 其有效版本适用于本
标准。
GB/T 14581 水质 湖泊和水库采样技术指导
HJ 494 水质 采样技术指导
HJ/T 91 地表水和污水监测技术规范
3 术语和定义
下列术语和定义适用于本标准。
3.1
粪大肠菌群 fecal coliforms
又称耐热大肠菌群（ thermotolerant coliforms）。 44.5℃培养 24 h， 能发酵乳糖产酸产气
的需氧及兼性厌氧革兰氏阴性无芽孢杆菌。
3.2
最大可能数 most probable number（ MPN）
又称稀释培养计数， 是一种基于泊松分布的间接计数法。 利用统计学原理， 根据一定体
积不同稀释度样品经培养后产生的目标微生物阳性数， 查表估算一定体积样品中目标微生物
存在的数量（ 单位体积存在目标微生物的最大可能数）。
4 方法原理
将样品加入含乳糖蛋白胨培养基的试管中， 37℃初发酵富集培养， 大肠菌群在培养基中
生长繁殖分解乳糖产酸产气， 产生的酸使溴甲酚紫指示剂由紫色变为黄色， 产生的气体进入
倒管中， 指示产气。 44.5℃复发酵培养， 培养基中的胆盐三号可抑制革兰氏阳性菌的生长，
最后产气的细菌确定为是粪大肠菌群。 通过查 MPN 表， 得出粪大肠菌群浓度值。
5 2
干扰和消除
5.1 活性氯具有氧化性， 能破坏微生物细胞内的酶活性， 导致细胞死亡， 可在样品采集 （ 8.1）
时加入硫代硫酸钠溶液（ 6.7） 消除干扰。
5.2 重金属离子具有细胞毒性， 能破坏微生物细胞内的酶活性， 导致细胞死亡， 可在样品
采集（ 8.1） 时加入乙二胺四乙酸二钠溶液（ 6.8） 消除干扰。
6 试剂和材料
除非另有说明， 分析时均使用符合国家标准的分析纯试剂或生物试剂， 实验用水为蒸馏
水或去离子水。
6.1 乳糖蛋白胨培养基。
蛋白胨 10 g
牛肉浸膏 3 g
乳糖 5 g
氯化钠 5 g
1.6%溴甲酚紫乙醇溶液 1 ml
将蛋白胨、 牛肉浸膏、 乳糖、 氯化钠加热溶解于 1000 ml 水中， 调节 pH 至 7.2～7.4，
再加入 1.6%溴甲酚紫乙醇溶液 1 ml， 充分混匀， 分装于含有倒置小玻璃管的试管中， 115℃
高压蒸汽灭菌 20 min， 储存于冷暗处备用。 也可选用市售成品培养基。
6.2 三倍乳糖蛋白胨培养基： 称取三倍的乳糖蛋白胨培养基（ 6.1） 成分的量， 溶于 1000 ml
水中， 配成三倍乳糖蛋白胨培养基， 配制方法同上。
6.3 EC 培养基。
胰胨 20 g
乳糖 5 g
胆盐三号 1.5 g
磷酸氢二钾 4 g
磷酸二氢钾 1.5 g
氯化钠 5 g
将上述成分或含有上述成分的市售成品加热溶解于 1000 ml 水中， 然后分装于有玻璃倒
管的试管中， 115℃高压蒸汽灭菌 20 min， 灭菌后 pH 值应在 6.9 左右。
注： 配制好的培养基（ 6.1～6.3） 避光、 干燥保存， 必要时在 5℃±3℃冰箱中保存， 通常瓶装及试管
装培养基不超过 3～6 个月。 配制好的培养基要避免杂菌侵入和水分蒸发， 当培养基颜色变化，
或体积变化明显时废弃不用。
6.4 无菌水： 取适量实验用水， 经 121℃高压蒸汽灭菌 20 min， 备用。
6.5 硫代硫酸钠（ Na2S2O3·5H2O）。
6.6 乙二胺四乙酸二钠（ C10H14N2O8Na2·2H2O）。
6.7 硫代硫酸钠溶液： ρ（ Na2S2O3） =0.10 g/ml
称取 15.7 g 硫代硫酸钠（ 6.5）， 溶于适量水中， 定容至 100 ml， 临用现配。
3
6.8 乙二胺四乙酸二钠溶液： ρ（ C10H14N2O8Na2·2H2O） =0.15 g/ml
称取 15 g 乙二胺四乙酸二钠（ 6.6）， 溶于适量水中， 定容至 100 ml， 此溶液可保存 30 d。
7 仪器和设备
7.1 采样瓶： 500 ml 带螺旋帽或磨口塞的广口玻璃瓶。
7.2 高压蒸汽灭菌器： 115℃、 121℃可调。
7.3 恒温培养箱或水浴锅： 允许温度偏差 37℃±0.5℃、 44℃±0.5℃。
7.4 pH 计： 准确到 0.1 pH 单位。
7.5 接种环： 直径 3 mm。
7.6 试管： 300 ml、 50 ml、 20 ml。
7.7 一般实验室常用仪器和设备。
注： 玻璃器皿及采样器具试验前要按无菌操作要求包扎， 121℃高压蒸汽灭菌 20 min 备用。
8 样品
8.1 样品采集
点位布设及采样频次按照 GB/T 14581、 HJ/T 494 和 HJ/T 91 的相关规定执行。
采集微生物样品时， 采样瓶（ 7.1） 不得用样品洗涤， 采集样品于灭菌的采样瓶中。 清
洁水体的采样量不低于 400 ml， 其余水体采样量不低于 100 ml。
采集河流、 湖库等地表水样品时， 可握住瓶子下部直接将带塞采样瓶插入水中， 约距水
面 10～15 cm 处， 瓶口朝水流方向， 拔瓶塞， 使样品灌入瓶内然后盖上瓶塞， 将采样瓶从水
中取出。 如果没有水流， 可握住瓶子水平往前推。 采样量一般为采样瓶容量的 80%左右。 样
品采集完毕后， 迅速扎上无菌包装纸。
从龙头装置采集样品时， 不要选用漏水龙头， 采水前将龙头打开至最大， 放水 3～5 min，
然后将龙头关闭， 用火焰灼烧约 3 min 灭菌或用 70%～75%的酒精对龙头进行消毒， 开足龙
头， 再放水 1 min， 以充分除去水管中的滞留杂质。 采样时控制水流速度， 小心接入瓶内。
采集地表水、 废水样品及一定深度的样品时， 也可使用灭菌过的专用采样装置采样。
在同一采样点进行分层采样时， 应自上而下进行， 以免不同层次的搅扰。
如果采集的是含有活性氯的样品， 需在采样瓶灭菌前加入硫代硫酸钠溶液（ 6.7）， 以除
去活性氯对细菌的抑制作用（ 每 125 ml 容积加入 0.1 ml 的硫代硫酸钠溶液）； 如果采集的是
重金属离子含量较高的样品， 则在采样瓶灭菌前加入乙二胺四乙酸二钠溶液（ 6.8）， 以消除
干扰（ 每 125 ml 容积加入 0.3 ml 的乙二胺四乙酸二钠溶液）。
注： 15.7 mg 硫代硫酸钠（ 6.5） 可去除样品中 1.5 mg 活性氯， 硫代硫酸钠用量可根据样品实际活性氯
量调整。
8.2 样品保存
采样后应在 2 h 内检测， 否则， 应 10℃以下冷藏但不得超过 6 h。 实验室接样后， 不能
立即开展检测的， 将样品于 4℃以下冷藏并在 2 h 内检测。
9 4
分析步骤
9.1 样品稀释及接种
9.1.1 15 管法
将样品充分混匀后， 在 5 支装有已灭菌的 5 ml 三倍乳糖蛋白胨培养基（ 6.2） 的试管中
（ 内有倒管）， 按无菌操作要求各加入样品 10 ml， 在 5 支装有已灭菌的 10 ml 单倍乳糖蛋白
胨培养基（ 6.1） 的试管中（ 内有倒管）， 按无菌操作要求各加入样品 1 ml， 在 5 支装有已灭
菌的 10 ml 单倍乳糖蛋白胨培养基（ 6.1） 的试管中（ 内有倒管）， 按无菌操作要求各加入样
品 0.1 ml。
对于受到污染的样品， 先将样品稀释后再按照上述操作接种， 以生活污水为例， 先将样
品稀释 104 倍， 然后按照上述操作步骤分别接种 10 ml、 1 ml 和 0.1 ml。 15 管法样品接种量
参考表见表 1。
当样品接种量小于 1 ml 时， 应将样品制成稀释样品后使用。 按无菌操作要求方式吸取
10 ml 充分混匀的样品， 注入盛有 90 ml 无菌水（ 6.4） 的三角烧瓶中， 混匀成 1:10 稀释样品。
吸取 1:10 的稀释样品 10 ml 注入盛有 90 ml 无菌水的三角烧瓶中， 混匀成 1:100 稀释样品。
其他接种量的稀释样品依次类推。
注： 吸取不同浓度的稀释液时， 每次必须更换移液管。
生活饮用水等清洁水体也可使用 12 管法。
表 1 15 管法样品接种量参考表

样品类型	接种量（ ml）
10	1	0.1	10-2	10-3	10-4	10-5
地表水	水源水	▲	▲	▲
湖泊（ 水库）	▲	▲	▲
河流	▲	▲	▲
废水	生活污水	▲	▲	▲
工业废水	处理前	▲	▲	▲
处理后	▲	▲	▲
地下水	▲	▲	▲

9.1.2 12 管法
将样品充分混匀后， 在 2 支装有已灭菌的 50 ml 三倍乳糖蛋白胨培养基（ 6.2） 的大试管
中（ 内有倒管）， 按无菌操作要求各加入样品 100 ml， 在 10 支装有已灭菌的 5 ml 三倍乳糖
蛋白胨培养基（ 6.2） 的试管中（ 内有倒管）， 按无菌操作要求各加入样品 10 ml。
5
9.2 初发酵试验
将接种（ 9.1） 后的试管， 在 37℃±0.5℃下培养 24 h±2 h。
发酵试管颜色变黄为产酸， 小玻璃倒管内有气泡为产气。 产酸和产气的试管表明试验阳
性。 如在倒管内产气不明显， 可轻拍试管， 有小气泡升起的为阳性。
9.3 复发酵试验
轻微振荡在初发酵试验（ 9.2） 中显示为阳性或疑似阳性（ 只产酸未产气） 的试管， 用
经火焰灼烧灭菌并冷却后的接种环（ 7.5） 将培养物分别转接到装有 EC 培养基（ 6.3） 的试
管中。 在 44.5℃±0.5℃下培养 24 h±2 h。 转接后所有试管必须在 30 min 内放进恒温培养箱
或水浴锅（ 7.3） 中。 培养后立即观察， 倒管中产气证实为粪大肠菌群阳性。
9.4 对照试验
9.4.1 空白对照
每次试验都要用无菌水（ 6.4） 按照步骤 9.1～9.3 进行实验室空白测定。
9.4.2 阳性及阴性对照
将粪大肠菌群的阳性菌株（ 如大肠埃希氏菌 Escherichia coli） 和阴性菌株（ 如产气肠杆
菌 Enterobacter aerogenes） 制成浓度为 300～3000 MPN/L 的菌悬液， 分别取相应体积的菌
悬液按接种（ 9.1） 的要求接种于试管中， 然后按初发酵试验（ 9.2） 和复发酵试验（ 9.3） 要
求培养， 阳性菌株应呈现阳性反应， 阴性菌株应呈现阴性反应， 否则， 该次样品测定结果无
效， 应查明原因后重新测定。
10 结果计算与表示
10.1 结果计算
接种 12 份样品时， 查附录 A 中表 A.1 可得每升粪大肠菌群 MPN 值。
接种 15 份样品时， 查附录 A 中表 A.2 得到 MPN 值， 再按照公式（ 1） 换算样品中粪大
肠菌群数（ MPN/L）：
MPN值100
C 
f
（ 1）
式中： C——样品中粪大肠菌群数， MPN/L；
MPN 值——每 100 ml 样品中粪大肠菌群数， MPN/100ml；
100——为 10×10 ml， 其中， 10 将 MPN 值的单位 MPN/100 ml 转换为 MPN/L， 10 ml
为 MPN 表中最大接种量；
f——实际样品最大接种量， ml。
10.2 结果表示
测定结果保留至整数位， 最多保留两位有效数字， 当测定结果≥100 MPN/L 时， 以科学
计 6
数法表示； 当测定结果低于检出限时， 12 管法以“未检出” 或“＜3 MPN/L” 表示； 15
管法以“未检出” 或“＜20 MPN/L” 表示。 粪大肠菌群检验记录及报告推荐格式参见附录
B。
11 精密度和准确度
11.1 精密度
6 个实验室对低浓度（ 地下水， 浓度均值为 54 MPN/L） 、 中浓度（ 地表水， 浓度均值
为 2.7×104 MPN/L） 和高浓度（ 生活污水， 浓度均值为 2.8×107 MPN/L） 三个不同浓度粪
大肠菌群的实际样品和有证标准样品（浓度为 3670 MPN/L， 可接受范围为 330～
7710 MPN/L）进行了 6 次重复测定： 实验室内相对标准偏差范围分别为 2.3%～3.8%、 2.0%～
11%、 1.1%～5.4%和 5.1%～17%； 实验室间相对标准偏差分别为 3.4%、 11%、 1.6%和 5.4%；
实验室间 95%置信区间见表 2。
表 2 实验室间 95%置信区间

低浓度（ MPN/L）	中浓度（ MPN/L）	高浓度（ MPN/L）	有证标准样品（ MPN/L）
均值	95%置信区间	均值	95%置信区间	均值	95%置信区间	均值	95%置信区间
54	47～62	2.7×104	9.6×103～ 7.9×104	2.8×107	2.2×107～ 3.6×107	3725	2413～5751

11.2 准确度
6 个实验室对含粪大肠菌群浓度为 3670 MPN/L（ 可接受范围为 330～7710 MPN/L） 的
标准样品进行了 6 次重复测定： 相对误差范围为-6.2%～ 8.4%； 相对误差最终值为
-1.7%±10.6%。
注： 微生物检测数据为偏态分布， 其测定结果全部经以 10 为底对数转换后进行计算。
12 质量保证和质量控制
12.1 培养基检验
更换不同批次培养基时要进行阳性和阴性菌株检验， 将粪大肠菌群的阳性菌株（ 如大肠
埃希氏菌 Escherichia coli） 和阴性菌株（ 如产气肠杆菌 Enterobacter aerogenes） 制成浓度为
300～3000 MPN/L 的菌悬液。 若使用的是定性标准菌株， 配制方法为先进行预实验， 摸清浓
度后按目标为 300～3000 MPN/L 稀释； 若使用的是定量标准菌株， 则可按照给定值直接稀
释。 稀释后分别取相应水量的菌悬液按接种（ 9.1） 的要求接种于试管中， 然后按初发酵试
验（ 9.2） 和复发酵试验（ 9.3） 要求培养， 阳性菌株应呈现阳性反应， 阴性菌株应呈现阴性
反应。
7
12.2 对照试验
12.2.1 空白对照
每次试验都要用无菌水做实验室空白测定（ 9.4.1）， 培养后的试管中不得有任何变色反
应。 否则， 该次样品测定结果无效， 应查明原因后重新测定。
12.2.2 阳性及阴性对照
定期按照 9.4.2 进行阳性及阴性对照试验， 阳性菌株应呈现阳性反应， 阴性菌株应呈现
阴性反应， 否则， 该次样品测定结果无效， 应查明原因后重新测定。
13 废物处理
使用后的废物及器皿须经 121℃高压蒸汽灭菌 30 min 或使用液体消毒剂（ 自制或市售）
灭菌。 灭菌后， 器皿方可清洗， 废物作为一般废物处置。
8
附录 A
（ 资料性附录）
最大可能数（ MPN） 表
表 A.1 12 管法最大可能数（ MPN） 表

10 ml 样品量的阳性管数	100 ml 样品量的阳性瓶数
0	1	2
1 L 样品中粪大肠菌群数	1 L 样品中粪大肠菌群数	1 L 样品中粪大肠菌群数
0	＜3	4	11
1	3	8	18
2	7	13	27
3	11	18	38
4	14	24	52
5	18	30	70
6	22	36	92
7	27	43	120
8	31	51	161
9	36	60	230
10	40	69	＞230
注： 接种 2 份 100 ml 样品， 10 份 10 ml 样品， 总量 300 ml。

表 A.2 15 管法最大可能数（ MPN） 表

各接种量阳性份数	MPN/100 ml	95%置信限	各接种量阳性份数	MPN/100 ml	95%置信限
10 ml	1 ml	0.1 ml	下限	上限	10 ml	1 ml	0.1 ml	下限	上限
0	0	0	＜2	3	0	0	8	1	19
0	0	1	2	＜0.5	7	3	0	1	11	2	25
0	0	2	4	＜0.5	7	3	0	2	13	3	31
0	0	3	5	3	0	3	16
0	0	4	7	3	0	4	20
0	0	5	9	3	0	5	23
0	1	0	2	＜0.5	7	3	1	0	11	2	25
0	1	1	4	＜0.5	11	3	1	1	14	4	34
0	1	2	6	＜0.5	15	3	1	2	17	5	46
0	1	3	7	3	1	3	20	6	60

9
续表

各接种量阳性份数	MPN/100 ml	95%置信限	各接种量阳性份数	MPN/100 ml	95%置信限
10 ml	1 ml	0.1 ml	下限	上限	10 ml	1 ml	0.1 ml	下限	上限
0	1	4	9	3	1	4	23
0	1	5	11	3	1	5	27
0	2	0	4	＜0.5	11	3	2	0	14	4	34
0	2	1	6	＜0.5	15	3	2	1	17	5	46
0	2	2	7	3	2	2	20	6	60
0	2	3	9	3	2	3	24
0	2	4	11	3	2	4	27
0	2	5	13	3	2	5	31
0	3	0	6	＜0.5	15	3	3	0	17	5	46
0	3	1	7	3	3	1	21	7	63
0	3	2	9	3	3	2	24
0	3	3	11	3	3	3	28
0	3	4	13	3	3	4	32
0	3	5	15	3	3	5	36
0	4	0	8	3	4	0	21	7	63
0	4	1	9	3	4	1	24	8	72
0	4	2	11	3	4	2	28
0	4	3	13	3	4	3	32
0	4	4	15	3	4	4	36
0	4	5	17	3	4	5	40
0	5	0	9	3	5	0	25	8	75
0	5	1	11	3	5	1	29
0	5	2	13	3	5	2	32
0	5	3	15	3	5	3	37
0	5	4	17	3	5	4	41
0	5	5	19	3	5	5	45
1	0	0	2	＜0.5	7	4	0	0	13	3	31
1	0	1	4	＜0.5	11	4	0	1	17	5	46
1	0	2	6	＜0.5	15	4	0	2	21	7	63
1	0	3	8	1	19	4	0	3	25	8	75
1	0	4	10	4	0	4	30
1	0	5	12	4	0	5	36
1	1	0	4	＜0.5	11	4	1	0	17	5	46
1	1	1	6	＜0.5	15	4	1	1	21	7	63
1	1	2	8	1	19	4	1	2	26	9	78

10
续表

各接种量阳性份数	MPN/100 ml	95%置信限	各接种量阳性份数	MPN/100 ml	95%置信限
10 ml	1 ml	0.1 ml	下限	上限	10 ml	1 ml	0.1 ml	下限	上限
1	1	3	10	4	1	3	31
1	1	4	12	4	1	4	36
1	1	5	14	4	1	5	42
1	2	0	6	＜0.5	15	4	2	0	22	7	67
1	2	1	8	1	19	4	2	1	26	9	78
1	2	2	10	2	23	4	2	2	32	11	91
1	2	3	12	4	2	3	38
1	2	4	15	4	2	4	44
1	2	5	17	4	2	5	50
1	3	0	8	1	19	4	3	0	27	9	80
1	3	1	10	2	23	4	3	1	33	11	93
1	3	2	12	4	3	2	39	13	110
1	3	3	15	4	3	3	45
1	3	4	17	4	3	4	52
1	3	5	19	4	3	5	59
1	4	0	11	2	25	4	4	0	34	12	93
1	4	1	13	4	4	1	40	14	110
1	4	2	15	4	4	2	47
1	4	3	17	4	4	3	54
1	4	4	19	4	4	4	62
1	4	5	22	4	4	5	69
1	5	0	13	4	5	0	41	16	120
1	5	1	15	4	5	1	48
1	5	2	17	4	5	2	56
1	5	3	19	4	5	3	64
1	5	4	22	4	5	4	72
1	5	5	24	4	5	5	81
2	0	0	5	＜0.5	13	5	0	0	23	7	70
2	0	1	7	1	17	5	0	1	31	11	89
2	0	2	9	2	21	5	0	2	43	15	110
2	0	3	12	3	28	5	0	3	58	19	140
2	0	4	14	5	0	4	76	24	180
2	0	5	16	5	0	5	95
2	1	0	7	1	17	5	1	0	33	11	93
2	1	1	9	2	21	5	1	1	46	16	120

11
续表

各接种量阳性份数	MPN/100 ml	95%置信限	各接种量阳性份数	MPN/100 ml	95%置信限
10 ml	1 ml	0.1 ml	下限	上限	10 ml	1 ml	0.1 ml	下限	上限
2	1	2	12	3	28	5	1	2	63	21	150
2	1	3	14	5	1	3	84	26	200
2	1	4	17	5	1	4	110
2	1	5	19	5	1	5	130
2	2	0	9	2	21	5	2	0	49	17	130
2	2	1	12	3	28	5	2	1	70	23	170
2	2	2	14	4	34	5	2	2	94	28	220
2	2	3	17	5	2	3	120	33	280
2	2	4	19	5	2	4	150	38	370
2	2	5	22	5	2	5	180	44	520
2	3	0	12	3	28	5	3	0	79	25	190
2	3	1	14	4	34	5	3	1	110	31	250
2	3	2	17	5	3	2	140	37	340
2	3	3	20	5	3	3	180	44	500
2	3	4	22	5	3	4	210	53	670
2	3	5	25	5	3	5	250	77	790
2	4	0	15	4	37	5	4	0	130	35	300
2	4	1	17	5	4	1	170	43	490
2	4	2	20	5	4	2	220	57	700
2	4	3	23	5	4	3	280	90	850
2	4	4	25	5	4	4	350	120	1000
2	4	5	28	5	4	5	430	150	1200
2	5	0	17	5	5	0	240	68	750
2	5	1	20	5	5	1	350	120	1000
2	5	2	23	5	5	2	540	180	1400
2	5	3	26	5	5	3	920	300	3200
2	5	4	29	5	5	4	1600	640	5800
2	5	5	32	5	5	5	≥2400	800
注 1： 接种 5 份 10 ml 样品、 5 份 1 ml 样品、 5 份 0.1 ml 样品。 注 2： 如果有超过三个的稀释度用于检验， 在一系列的十进稀释当中， 计算 MPN 时， 只需要用其中依次三个 的稀释度， 取其阳性组合。 选择的标准是： 先选出 5 支试管全部为阳性的最大稀释(小于它的稀释度也全部为 阳性试管)， 然后再加上依次相连的两个更高的稀释。 用这三个稀释度的结果数据来计算 MPN 值。

附录 B
（ 资料性附录）
粪大肠菌群检验记录及报告推荐格式
表 B.1 粪大肠菌群测定检验记录
项目名称： 检验日期： 年 月 日

检验方法	方法依据
灭菌锅型号	出厂编号
培养箱型号	出厂编号
培养基灭菌温度（ ℃）	培养温度（ ℃）
样品编号： 查表结果： 粪大肠菌群数 MPN/100 ml 稀释度： 结果： MPN/L
标本接种（ ml）
初发酵
复发酵
阳性管数（ 个）

检验者： 校对： 审核：
注 1： 初发酵和复发酵后面的表格里， 产酸产气的用“ +” 表示， 否则用“—” 表示。
注 2： 可根据实际工作需要自行设计表格， 至少要包括上述信息。
表 B.2 粪大肠菌群测定数据报告

样品来源
采/送样日期	分析日期
样品数量
样品状态
监测点位	样品编号	监测频次
标准方法名称	标准方法编号
测定值：	监测结果：
备注

注： 可根据实际工作需要自行设计表格， 至少要包括上述信息。